核糖体核糖核酸

核醣體的核糖核酸組分,對於所有生物體中的蛋白質合成是必需的
(重定向自核醣體RNA

核糖体RNAribosomal RNA, rRNA)是生物细胞中主要的核糖核酸之一,是一种具有催化能力的核糖酶,但其单独存在时不能如其他核糖核酸那样发挥作用,仅在与多种核糖体蛋白质共同构成核糖体(一种无膜细胞器)后才能执行其功能。23S和28S rRNA在转译过程中作为肽酰转移酶催化多肽(包括蛋白质)中氨基酸之间肽键的形成。rRNA是单链RNA,但通过折叠形成了广泛的双链区域。

原核生物与真核生物中的rRNA

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原核生物真核生物的核糖体都能被分为两个可相互分离的亚基:

生物种类 类型 大亚基 小亚基
原核生物 70S 50S5S23S 30S16S
真核生物 80S 60S5S5.8S28S 40S18S

注意:“S”(沉降速度)这个单位是不能直接简单相加的,因为它代表沉降速度的度量而不是质量。每个亚基的沉降速度既受到其形状的影响,又受到其质量的影响。

70S核糖体中的rRNA

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原核细胞真核细胞内共生体的70S核糖体中包含3种沉降系数不同的rRNA,其中30S核糖体亚基中包含16S rRNA50S核糖体亚基中包含5S rRNA23S rRNA[1]这3种rRNA在结构上有明显的不同。[2]

编码细菌三种rRNA的基因常被按16S-23S-5S的顺序组合在同一操纵子中共同转录。在细菌基因组中,往往有多个rRNA操纵子(例如大肠杆菌有七个:rrnA、B、C、D、E、G和H[3] ),当其中一部分被敲除后,仍可通过基因转换的方式从其他操纵子上获得。[4]古菌则存在只有单组rRNA操纵子的情况。

30S rRNA前体

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70S核糖体中的16S和23S rRNA由30S rRNA前体经加工产生,30S rRNA前体的相对分子质量约为2 MDa。在该加工过程中,30S rRNA前体的特定碱基被甲基化,然后经水解断裂产生17S和25S rRNA中间产物,再经核酸酶的作用去除少量核苷酸残基才最终分别得到16S和23S rRNA。而5S rRNA是从30S rRNA的3'端分离的。[5]

16S rRNA

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原核生物的30S核糖体亚基中含有16S rRNA。16S rRNA的相对分子质量约为0.6 MDa,[6]长度约为1540 nt。[7]在30S核糖体亚基组装过程中,16S rRNA与其核糖体蛋白质S4S7S8S15S17S20结合先行成初级复合物。[8]

16S rRNA约有一半的核苷酸形成链内碱基对,使其具有约60个螺旋;分子中未配对部分则形成突环。在浓度足够的Mg2+存在下分离得到的16S rRNA处于紧密状态,与30S核糖体亚基的结构相似。已发现16S rRNA中的一些序列与蛋白质合成时30S核糖体亚基、mRNA及一些翻译因子的结合有关。[9]核糖体16S rRNA的3'端能识别待翻译mRNA的5'端的夏因-达尔加诺序列[10]起始翻译。另有研究表明,16S rRNA也能与进入核糖体P位点的tRNA相互作用。[11]

16S rRNA作为研究分类学系统进化的分子[12]受到很大重视,[13]16S rRNA序列分析是当前对细菌进行分类学研究中较精确的一种技术。[14]随着分子生物学的快速发展以及该技术在医学微生物研究中的应用,对16S rRNA作为微生物分类依据的研究也逐渐发展起来[15]并已得到广泛认同。[16]

位于原核生物70S核糖体A位点的16S rRNA部分的是氨基糖苷类抗生素的作用靶位,该类抗生素通过与16S rRNA的A位点结合而阻碍原核翻译[17]但由质粒介导的16S rRNA甲基化酶能将16S rRNA甲基化,从而导致细菌产生对该类抗生素较高的抗药性[18]

5S rRNA

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基本上所有70S核糖体与80S核糖体(除了少数真菌、少数原生动物和少数较高级动物的线粒体核糖体[19])的大亚基中都含有5S rRNA。

5S rRNA相对分子质量约为40 kDa,[6]长度约为120 nt,[20]分子中有5个螺旋。[21]它在70S核糖体的50S核糖体亚基中与核糖体蛋白质L5L18L25结合。[22]5S rRNA约60%的核苷酸形成了链内碱基对。[9]已有研究表明,5S rRNA具有一个与tRNA特定序列互补的序列。[23]

70S核糖体中的5S rRNA被认为是一种传感装置,能促进核糖体中各功能中心的交流并组织翻译的进行。[24][25]缺少5S rRNA的核糖体的肽酰转移酶活性会下降。[26]

23S rRNA

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23S rRNA的相对分子质量约为1.2 MDa,[6]长度约为2900 nt,[27]分子一半以上核苷酸以分子内双链形式存在,[9]产生超过100个螺旋。[28] 它在70S核糖体的50S亚基中与核糖体蛋白质L1L2L3L4L9L23结合形成初级复合物。[29]对紧密状态下23S rRNA的电镜研究表明,23S rRNA的形状与50S核糖体亚基相似。[9]

23S rRNA是核糖体催化功能的核心,[30]其结构域Ⅴ具有肽酰转移酶活性。[31]位于核糖体P位点的23S rRNA部分有特定区域能与进入核糖体的tRNA形成互补碱基对。[32]

P位点的23S rRNA部分是大环内酯类抗生素的作用靶位,该类抗生素通过与23S rRNA阻碍肽链延伸。但一些细菌可利用erm基因介导23S rRNA甲基化酶[33]使23S rRNA的甲基化,[34]从而降低核糖体对抗生素的亲合性;也有细菌能通过核糖体变构来影响抗生素作用。[35]

80S核糖体中的rRNA

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小亚基核糖体RNA的5'端域,来自Rfam数据中。该例子是:RF00177

80S核糖体中包含4种沉降系数不同的rRNA,其中,40S核糖体亚基(小亚基)中包含18S rRNA,而60S核糖体亚基(大亚基)中包含5S rRNA5.8S rRNA28S rRNA

28S、5.8S与18S rRNA由单独的一个转录单位(45S rDNA)所转录,它们之间被两个内转录间隔区分隔。[36]45S rDNA被组织于5基因簇中,每个簇中大约有30-40次重复(真核生物在串联重复序列中通常拥有多个rDNA的备份),人类大概有300-400个rDNA重复段存在于五个基因簇中(分别在1314152122号染色体上)。

45S rRNA前体

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80S核糖体中的28S rRNA、5.8S rRNA和18S rRNA由长度约为14,000 nt的45S rRNA前体细胞核核仁加工产生。加工过程中,该rRNA前体的100多个核苷酸会被甲基化,再经过一系列酶促反应被剪切成几条RNA链。[5]

18S rRNA

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18S rRNA是16S rRNA的同源RNA,其相对分子质量约为0.7 MDa,[6]长度约为1900 nt。[27]18S rRNA除了比16S rRNA稍长且多一些臂和环结构外,两者空间结构十分相似,[9]在核糖体中起到的作用也基本相同。

5S rRNA

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真核细胞中的5S rDNA存在于串联重复基因中(大约有200-300个真5S rDNA,且另有许多分散的假基因),人类的最大的一个位于1号染色体长臂41号带-42号带上。5S rDNA与其余三种80S核糖体的rRNA的基因不同,该基因并不位于核仁组织区,且由RNA聚合酶III所转录。

5.8S rRNA

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5.8S rRNA的相对分子质量约为40 kDa,[6]长度约为160 nt。[27]也存在于古菌细胞中。

核糖体中的5.8S rRNA被认为起到辅助核糖体易位的作用。[37]

5.8S rRNA可以用作探测miRNA内参基因[38]

28S rRNA

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28S rRNA是23S rRNA的同源RNA,其相对分子质量约为1.7 MDa,[6]长度约为4700 nt。[27]真核生物28S rRNA的结构与大肠杆菌23S rRNA的相似。[9]

其他rRNA

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  • 部分植物细胞的叶绿体中也含有80S核糖体,故也拥有4种rRNA分子。

rRNA的重要性

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rRNA的某些特征在物种进化医药方面的研究十分重要。

  • rRNA是所有细胞中都会表达的基因,即所有拥有细胞结构的生物都拥有rRNA[39]。因此可以通过对编码rRNA的基因进行测序来对某种生物进行分类学上的分类、计算出相关的种群或估测物种的差异度。已有逾千种rRNA已被测序,测序的结果被储存在特殊的数据库(如RDP-II[40]SILVA页面存档备份,存于互联网档案馆[41])中。

rRNA的研究价值

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在近年的系统发育树中,rRNA序列(尤其是小亚基rRNA,SSU rRNA)成为最常用的做树依据,因为SSU rRNA具有以下特点:

  • 长度适中,通常为1200-1900 nt,能够提供足够的信息但又不过长。
  • 完全广泛分布于所有具有细胞结构的生物,而且进化过程相对缓慢。其中保守区可用于构建所有生命的统一进化树,而易变的区域可用来区别或者
  • rRNA基因的水平转移非常难发生,因为它们的功能十分基本且重要,需要翻译机制的精细调控才能够正常实现功能。

相关基因

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细胞质基质核糖体大亚基核糖体蛋白基因

RPL1RPL2RPL3RPL4RPL5RPL6RPL7RPL8RPL9RPL10RPL11RPL12RPL13RPL14RPL15RPL16RPL17RPL18RPL19RPL20RPL21RPL22RPL23RPL24RPL25RPL26RPL27RPL28RPL28RPL30RPL31RPL32RPL33RPL34RPL35RPL36RPL37RPL38RPL39RPL40RPL41

线粒体核糖体大亚基核糖体蛋白基因

MRPL1MRPL2MRPL3MRPL4MRPL5MRPL6MRPL7MRPL8MRPL9MRPL10MRPL11MRPL12MRPL13MRPL14MRPL15MRPL16MRPL17MRPL18MRPL19MRPL20MRPL21MRPL22MRPL23MRPL24MRPL25MRPL26MRPL27MRPL28MRPL29MRPL30MRPL31MRPL32MRPL33MRPL34MRPL35MRPL36MRPL37MRPL38MRPL39MRPL40MRPL41MRPL42

细胞质基质核糖体小亚基核糖体蛋白基因

RPS1RPS2RPS3RPS4RPS5RPS6RPS7RPS8RPS9RPS10RPS11RPS12RPS13RPS14RPS15RPS16RPS17RPS18RPS19RPS20RPS21RPS22RPS23RPS24RPS25RPS26RPS27RPS28RPS29

线粒体核糖体小亚基核糖体蛋白基因

MRPS1MRPS2MRPS3MRPS4MRPS5MRPS6MRPS7MRPS8MRPS9MRPS10MRPS11MRPS12MRPS13MRPS14MRPS15MRPS16MRPS17MRPS18MRPS19MRPS20MRPS21MRPS22MRPS23MRPS24MRPS25MRPS26MRPS27MRPS28MRPS29MRPS30MRPS31MRPS32MRPS33MRPS34MRPS35

参见

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参考资料

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  1. ^ 王镜岩、朱圣庚、徐长法. 生物化学第三版. 北京市西城区德外大街4号: 高等教育出版社. 2002年: 474 [2011年2月9日]. ISBN 7-04-011088-1 (中文(简体)). 
  2. ^ K. A. Hartman and G. J. Thomas Jr. Secondary Structure of Ribosomal RNA. Science. 1970, 170: 740–741. doi:10.1126/science.170.3959.740. 
  3. ^ Hillebrand A,Wurm R,Menzel A,Wagner R. The seven E. coli ribosomal RNA operon upstream regulatory regions differ in structure and transcription factor binding efficiencies. Biol Chem. 2005. PMID 16006239. 
  4. ^ David Ammons and Joanne Rampersad. An E. coli 5S rRNA Deletion Mutant Useful for the Study of5SrRNAStructure/Function Relationships (PDF) 43. 2000. doi:10.1007/s002840010266. [永久失效链接]
  5. ^ 5.0 5.1 聂剑出、吴国利、张翼伸、杨绍钟、刘鸿铭. 生物化学简明教程. 北京市东城区沙滩后街55号: 高等教育出版社. 2002年: 265–266. ISBN 7-04-007259-9 (中文(简体)). 
  6. ^ 6.0 6.1 6.2 6.3 6.4 6.5 核糖体相关信息. [2011-02-24]. (原始内容存档于2008-07-24). 
  7. ^ Jurgen Brosius, Margaret L. Palmer, Poindexter J. Kennedy, and Harry F. Noller. Complete nucleotide sequence of a 16S ribosomal RNA gene from Escherichiacoli (recombinant plasmids/DNA sequence analysis/rrnB cistron) (PDF). Biochemistry. 1978: 4801–4805 [2011-02-10]. (原始内容存档 (PDF)于2015-09-24). 
  8. ^ Hamacher K, Trylska J, McCammon JA. Dependency Map of Proteins in the Small Ribosomal Subunit. PLoS Comput. Biol. 2006, 2. PMID 16485038. 
  9. ^ 9.0 9.1 9.2 9.3 9.4 9.5 聂剑出、吴国利、张翼伸、杨绍钟、刘鸿铭. 生物化学简明教程. 北京市东城区沙滩后街55号: 高等教育出版社. 2002年: 59–60. ISBN 7-04-007259-9 (中文(简体)). 
  10. ^ Shine J, Dalgarno L. Determinant of cistron specificity in bacterial ribosomes. Nature. 1975, 254 (5495): 34–8 [2011-02-10]. PMID 803646. doi:10.1038/254034a0. (原始内容存档于2012-06-01). 
  11. ^ Noller HF,Hoang L,Fredrick K. The 30S ribosomal P site: a function of 16S rRNA. FEBS Lett. 2005: 855–858 [2014-03-02]. PMID 15680962. (原始内容存档于2019-06-03). 
  12. ^ Woese C, Kandler O, Wheelis M. Towards a natural system of organisms: proposal for the domains Archaea, Bacteria, and Eucarya.. Proc Natl Acad Sci USA. 1990, 87 (12): 4576–9 [2011-02-10]. PMC 54159 . PMID 2112744. doi:10.1073/pnas.87.12.4576. (原始内容存档于2020-04-13). 
  13. ^ 陈国忠、李文均、徐丽华、姜成林. 16S rRNA二级结构的研究进展及其在系统分类中的应用. Journal of Microbiology. 2005年, 25 [2011-02-07]. (原始内容存档于2012-01-13). 
  14. ^ 郭亚辉. 根据16S rRNA序列对假单胞菌属分类学的研究进展. Journal of Microbiology. 2004年, 24 [2011-02-07]. (原始内容存档于2012-01-13). 
  15. ^ 刘杨、崔晓龙、李文均、彭谦. RNA二级结构在微生物系统发育分析上的应用. Microbiology. 2006年, 33 [2011-02-07]. (原始内容存档于2012-01-13). 
  16. ^ 张志明、孙海英、李建平. 16S rRNA在医学微生物鉴定中的应用. International Journal of Laboratory Medicine. 2010年, 31 [2011-02-07]. doi:10.3760/cma.j.issn.1673-4130.2010.04.017. (原始内容存档于2012-01-14). 
  17. ^ 吴琼、倪语星. 一种新的氨基糖苷类耐药决定因子:质粒介导的16S rRNA甲基化酶. Journal of Microbes and Infection. 2009年, 4 [2011-02-07]. (原始内容存档于2012-01-14). 
  18. ^ 周颖杰、余慧、郭庆兰、徐晓刚、叶信予、吴湜、郭燕、王明贵. 16S rRNA甲基化酶在氨基糖苷类抗生素耐药革兰阴性菌中的分布. 中国感染与化疗杂志. 2010年, 10 [2011-02-07]. (原始内容存档于2012-01-13). 
  19. ^ Gray, M.W., Burger, G.&Lang, B.F. Mitochondrial evolution. Science. 1999: 1476–1481 [2011-02-10]. PMID 10066161. (原始内容存档于2012-07-17). 
  20. ^ Barciszewska MZ,Szymański M,Erdmann VA,Barciszewski J. Structure and functions of 5S rRNA. Acta Biochim. 2001: 191–198 [2014-03-02]. PMID 11440169. (原始内容存档于2020-04-10). 
  21. ^ Luehrsen, Kenneth R. ; Fox, George E. Secondary Structure of Eukaryotic Cytoplasmic 5S Ribosomal RNA. PNAS. 1981, 78 (4): 2150–2154. doi:10.1073/pnas.78.4.2150. 
  22. ^ Paulw. Huber and Ira G. Wool. Nuclease protection analysis of ribonucleoprotein complexes: Use of the cytotoxic ribonucleasea-sarcinto determine the binding sites for Escherichia coli ribosomal proteins L5, L18, and L25 on 5S rRNA (PDF). Biochemistry. 1984: 322–326. 
  23. ^ George E. FoxandCarl R. Woese. The architecture of 5S rRNA and its relation to function (PDF). Journal of Molecular Olecular Evolution: 61–76. doi:10.1007/BF01732674. [永久失效链接]
  24. ^ Alexey A. Bogdanov, Olga A. Dontsova, Svetlana S. Structure and function of 5S rRNA in the ribosome. Biochem. Cell Biol. 1995: 869–876. doi:10.1139/o95-094. [永久失效链接]
  25. ^ Dokudovskaya S,Dontsova O,Shpanchenko O,Bogdanov A,Brimacombe R. Loop IV of 5S ribosomal RNA has contacts both to domain II and to domain V of the 23S RNA. RNA. 1996: 146–152 [2011-02-10]. PMID 8601281. (原始内容存档于2019-06-04). 
  26. ^ Khaitovich P,Mankin AS. Effect of antibiotics on large ribosomal subunit assembly reveals possible function of 5S rRNA.. J Mol Biol. 1999: 1025–1034 [2011-02-10]. PMID 10518910. (原始内容存档于2019-06-10). 
  27. ^ 27.0 27.1 27.2 27.3 27.4 核糖体相关信息2页面存档备份,存于互联网档案馆
  28. ^ H F Noller, J Kop, V Wheaton, J Brosius, R R Gutell, A M Kopylov, F Dohme, W Herr, D A Stahl, R Gupta, and C R Waese. Secondary structure model for 23S ribosomal RNA. Nucleic Acids Res. 1981: 6167–6189. PMC 327592 . 
  29. ^ Otfried Marquardt, Hans E.Roth, Gabriele Wystup and Knud H. Binding of Escherichia coli ribosomal proteins to 23SRNA under reconstitution conditions for the SOS subunit. Nucleic Acids Research. 1979, 6: 3641–3650. 
  30. ^ HF Noller, V Hoffarth, and L Zimniak. Unusual resistance of peptidyl transferase to protein extraction procedures. Science. 1992: 1416–1419 [2011-02-12]. (原始内容存档于2008-04-22). 
  31. ^ Functional interactions within 23S rRNA involving the peptidy ltransferase center. J Bacteriol. 1992, 174: 1333–1338 [2011-02-12]. PMC 206429 . (原始内容存档于2008-10-11). 
  32. ^ Samaha RR,Green R,Noller HF. A base pair between tRNA and 23S rRNA in the peptidyl transferase centre of the ribosome. Nature. 1995: 309–314 [2011-02-11]. PMID 7566085. (原始内容存档于2019-06-04). 
  33. ^ Leclercq R,Courvalin P. Resistance to macrolides and related antibiotics in Streptococcus pneumoniae. Antimicrob Agents Chenmother. 2002: 2727–2734. 
  34. ^ Van Eldere J,Meekers E,Lagrou K; et al. Macrolide resistance mechanisms in Streptococcus pneumoniae isolates from Belgium. Clin Microbiol Infect. 2005: 332–334. 
  35. ^ Doktor S Z,Shortridge V D,Beyer J M; et al. Epidemiology ofmacrolide and/or lincosamide resistant Streptococcus pneumoniae clinical isolates with ribosomal mutations. Diagn Microbiol Infect Dis. 2004: 4752. 
  36. ^ 孙隽、文建凡. 不同寻常的贾第虫rDNA. 《中国细胞生物学学会2005年学术大会、青年学术研讨会论文摘要集》. 2005 [2011-02-11]. (原始内容存档于2019-08-26). 
  37. ^ Abou, Elela S; Nazar RN. Role of the 5.8S rRNA in ribosome translocation. Nucleic Acids Res. 1997, 25 (9): 1788–1794. PMC 146658 . PMID 9108162. doi:10.1093/nar/25.9.1788. 
  38. ^ Shi R, Chiang VL. Facile means for quantifying microRNA expression by real-time PCR. BioTechniques. October 2005, 39 (4): 519–25 [2010-09-15]. PMID 16235564. doi:10.2144/000112010. (原始内容存档于2012-07-31). 
  39. ^ Smit S, Widmann J, Knight R. Evolutionary rates vary among rRNA structural elements. Nucleic Acids Res. 2007, 35 (10): 3339–54. PMC 1904297 . PMID 17468501. doi:10.1093/nar/gkm101. 
  40. ^ Cole, JR; Chai B, Marsh TL, Farris RJ, Wang Q, Kulam SA, Chandra S, McGarrell DM, Schmidt TM, Garrity GM, Tiedje JM. The Ribosomal Database Project (RDP-II): previewing a new autoaligner that allows regular updates and the new prokaryotic taxonomy. Nucleic Acids Res. 2003, 31 (1): 442–3. PMC 165486 . PMID 12520046. doi:10.1093/nar/gkg039. 
  41. ^ Pruesse, E; Quast C, Knittel K, Fuchs BM, Ludwig W, Peplies J, Gloeckner FO. SILVA: a comprehensive online resource for quality checked and aligned ribosomal RNA sequence data compatible with ARB. Nucleic Acids Res. 2007, 35 (1): 7188–7196. PMC 2175337 . PMID 17947321. doi:10.1093/nar/gkm864. 
  42. ^ 张旭东. 两类氨基糖苷类抗生素与16S rRNA A位点相互作用的理论研究. 2005. 

外部链接

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