硫代葡萄糖苷

硫代葡萄糖苷是许多辛辣植物的天然成分,如芥末卷心菜辣根。 这些植物的刺激性是由于当植物材料被咀嚼,切割或以其他方式损坏时由芥子油苷产生的芥子油。 这些天然化学物质最有可能有助于植物防御病虫害,并赋予十字花科蔬菜特有的苦味。[1]

硫代葡萄糖苷,R为侧链基团

含硫代葡萄糖苷的植物

编辑

硫代葡萄糖苷是几乎所有芸苔属植物的次生代谢产物,例如芸苔目中有重要经济用途的十字花科山柑科番木瓜科。 在芸苔属植物之外,非洲核果木科中的Drypetes属[2]和Putranjiva属是唯一已知含有硫代葡萄糖苷的属。 硫代葡萄糖苷存在于各种可食用植物中,例如卷心菜类(白卷心菜,大白菜西兰花),西洋菜辣根刺山柑萝卜,其中分解产物通常贡献了它们的独特味道。 硫代葡萄糖苷也存在于这些植物的种子中。[1]

化学

编辑

硫代葡萄糖苷衍生自葡萄糖氨基酸,构成一类含有的天然有机化合物。它们是水溶性阴离子,属于葡萄糖苷。每个硫代葡萄糖苷含有中心碳原子,其通过硫原子与硫代葡萄糖基团结合,并通过氮原子与硫酸基团结合(形成硫酸化醛肟)。另外,中心碳与侧基结合;不同的硫代葡萄糖苷具有不同的侧基,并且侧基的变化是造成这些植物化合物的生物活性变化的原因。硫代葡萄糖苷的半系统命名由该侧链的化学名称和“硫代葡萄糖苷”组成,例如烯丙基芥子油苷与烯丙基硫代葡萄糖苷。[3] 硫代葡萄糖苷化学的实质是硫代葡萄糖苷在黑芥子酶酶水解硫代葡萄糖苷键后转化为异硫氰酸酯(“芥子油”)的能力。[3]

一些硫代葡萄糖苷:[3]

  • 黑芥子苷(sinigrin,烯丙基芥子油苷)是异硫氰酸烯丙酯的前体
  • 芐基芥子油苷(Glucotropaeolin)是异硫氰酸芐酯的前体
  • 苯乙基芥子油苷(Gluconasturtiin)是苯乙基异硫氰酸酯的前体
  • (R)-4-(甲基亚磺酰基)丁基芥子油苷(Glucoraphanin)是(R)-4-(甲基亚磺酰基)丁基异硫氰酸酯(萝卜硫素)的前体
  • (R)-2-羟基丁-3-烯基芥子油苷(progoitrin)可能是(S)-2-羟基丁-3-烯基异硫氰酸酯的前体,预计它是不稳定的,并会立即环化形成(S)-5-乙烯基𫫇唑烷-2-硫酮(甲壳素)

生物化学

编辑

来自少数氨基酸的天然多样性

编辑

已知大约132种不同的硫代葡萄糖苷在植物中天然存在。 它们由某些氨基酸合成,如脂肪族硫代葡萄糖苷,主要来源于蛋氨酸,其余还有丙氨酸亮氨酸异亮氨酸缬氨酸。 (大多数硫代葡萄糖苷实际上衍生自这些氨基酸的链延长同源物,例如,萝卜硫苷衍生自二高蛋氨酸,其是甲硫氨酸链延长两次)。芳香硫代葡萄糖苷包括衍生自色氨酸的吲哚,例如来自色氨酸的芥子油苷,还有的来自苯丙氨酸,其链延长的同系物高苯丙氨酸,和来自酪氨酸的sinalbin。[4]

酶激活

编辑

在有水的条件下,植物中的黑芥子酶会从硫代葡萄糖苷中切除葡萄糖基团。[5] 然后剩余的分子迅速转化为异硫氰酸酯硫氰酸盐;这些是植物自我防御的活性物质。 硫代葡萄糖苷也称为芥子油糖苷,由于此反应的标准产物是异硫氰酸酯(芥子油); 另外两种产物主要于含有专门改变反应结果的植物蛋白质的条件下产生。[6]

 
芥子油糖苷1被转化为异硫氰酸酯'3'('芥子油)。 葡萄糖2也被释放,图中仅显示β形式。R = 烯丙基, , 2-苯乙基等。[来源请求]

在上文说明的化学反应中,与实际相比,图左侧的红色弯曲箭头被简化了,因为未显示酶黑芥子酶的作用。 然而,所示的机理基本上与酶催化反应一致。

相比之下,如图中右侧的红色弯曲箭头所示,这种产生异硫氰酸酯的原子重排,被认为是非酶促的。 这种类型的重排可以被命名为Lossen-reaarrangement或类似Lossen的重排,因为该名称被首先用来指导致有机异氰酸酯的类似反应(R-N = C = O)。[来源请求]

为了防止对植物本身的损害,黑芥子酶和硫代葡萄糖苷被储存在细胞的不同隔室中或组织中的不同细胞中,并且仅(主要)在遭到物理损伤的条件下聚集在一起。[来源请求]

生物效应

编辑

人类和其他哺乳动物

编辑

益处

编辑

食用较多十字花科蔬菜的人群似乎癌症发病率、老年痴呆率都较低,硫苷及异氰酸盐分解产物可能为有效成分之一。[7][8][9]

硫苷及分解产物在动物和细胞模型中有抗肿瘤、抗氧化、抗痴呆等作用,但直接加入人类饮食中的益处尚不明确。[10]

毒性

编辑

如果硫代葡萄糖苷的浓度高于一种动物可接受的浓度,那么含硫代葡萄糖苷的作物作为动物的主要食物来源会产生负面影响。硫苷的分解产物中,异氰酸盐造成苦味降低摄食,腈基物质可能影响健康,[11]硫氰酸及其酯已被证实有抑制碘吸收的抗甲状腺素作用,会造成甲状腺肿大[12] 然而,即使在同一属(例如开罗刺鼠金刺鼠)中,对硫代葡萄糖苷的植物耐受水平也不同。[13]

菜籽油压榨剩下的油渣饼富集了菜籽中大部分的硫苷,如果作为饲料的主要成分,就可能超过可接受浓度,造成上述的不良反应。[14][15]饲料可以经过处理,洗去硫苷。[16]培育低硫苷菜籽可以提高油渣饼作为饲料的经济价值,是油菜育种的重要方向之一。[17]

十字花科蔬菜在不缺碘的人类无抗甲状腺作用。曾有研究召集志愿者连续四周每天食用150克抱子甘蓝,未造成甲状腺功能异常。在缺碘地区,食用大量十字花科蔬菜可能提高甲状腺癌风险,但在碘摄入正常地区则无此现象。[18]

味觉和饮食行为

编辑

其中,硫代葡萄糖苷黑芥子苷被证明是导致烹熟的花椰菜抱子甘蓝的苦味的原因。[1][19] 硫代葡萄糖苷可能会改变动物的饮食行为。[20]

昆虫

编辑

硫代葡萄糖苷及其产品对许多昆虫具有负面影响,其原因是威慑和毒性的结合。为了在农学背景下应用这一原理,一些硫代葡萄糖苷衍生的产品可以作为拒食剂,即天然杀虫剂[21] 相比之下,十字花科植物的害虫小菜蛾可能会识别出硫代葡萄糖苷的存在,从而可以识别出适当的寄主植物。[22]实际上,在含硫代葡萄糖苷的植物上有一种特有的,专门的昆虫,包括蝴蝶,如欧洲粉蝶菜粉蝶红襟粉蝶,还有某些蚜虫,飞蛾,如南方粘虫,锯蝇和跳蚤甲虫。[来源请求]例如,欧洲粉蝶将卵产在这些含硫代葡萄糖苷的植物上,幼虫即使含有高水平的硫代葡萄糖苷也能存活,并食用含有硫代葡萄糖苷的植物材料。[来源请求]菜粉蝶和都红襟粉蝶具有一种腈特异性蛋白质,它将硫代葡萄糖苷水解转向腈类而不是反应性异硫氰酸酯。[23] 相比之下,小菜蛾具有完全不同的蛋白质,硫代葡萄糖苷硫酸酯酶,它会硫酸化硫代葡萄糖苷,从而使它们不适合黑芥子酶降解为有毒产物。[24]

其他种类的昆虫(特定的锯蝇和蚜虫)螯合硫代葡萄糖苷。[25]在一种特殊的蚜虫中,它的肌肉组织中被发现有一种独特的动物黑芥子酶,导致蚜虫组织破坏时螯合硫代葡萄糖苷的降解,但锯蝇中没有。[26] 这种针对同一种植物化学品的多样化生物化学解决方案在植物 - 昆虫关系的演变中起著关键作用。[27]

参考文献

编辑
  1. ^ 1.0 1.1 1.2 Ishida, M; Hara, M; Fukino, N; Kakizaki, T; Morimitsu, Y. Glucosinolate metabolism, functionality and breeding for the improvement of Brassicaceae vegetables. Breeding Science. 2014, 64 (1): 48–59. PMC 4031110 . PMID 24987290. doi:10.1270/jsbbs.64.48. 
  2. ^ James E. Rodman; Kenneth G. Karol; Robert A. Price; Kenneth J. Sytsma. Molecules, Morphology, and Dahlgren's Expanded Order Capparales. Systematic Botany. 1996, 21 (3): 289–307. JSTOR 2419660. doi:10.2307/2419660. 
  3. ^ 3.0 3.1 3.2 Agerbirk N, Olsen CE. Glucosinolate structures in evolution. Phytochemistry. 2012, 77: 16–45. PMID 22405332. doi:10.1016/j.phytochem.2012.02.005. 
  4. ^ Niels Agerbirk; Carl Erik Olsen. Glucosinolate structures in evolution. Phytochemistry. 2012, 77: 16–45. PMID 22405332. doi:10.1016/j.phytochem.2012.02.005. 
  5. ^ Bongoni, R; Verkerk, R; Steenbekkers, B; Dekker, M; Stieger, M. Evaluation of Different Cooking Conditions on Broccoli (Brassica oleracea var. italica) to Improve the Nutritional Value and Consumer Acceptance. Plant Foods for Human Nutrition. 2014, 69 (3): 228–234. PMID 24853375. doi:10.1007/s11130-014-0420-2. 
  6. ^ Burow, M; Bergner, A; Gershenzon, J; Wittstock, U. Glucosinolate hydrolysis in Lepidium sativum--identification of the thiocyanate-forming protein. Plant Molecular Biology. 2007, 63 (1): 49–61. PMID 17139450. doi:10.1007/s11103-006-9071-5. 
  7. ^ Abbaoui, B; Lucas, CR; Riedl, KM; Clinton, SK; Mortazavi, A. Cruciferous Vegetables, Isothiocyanates, and Bladder Cancer Prevention.. Molecular nutrition & food research. 2018-09, 62 (18): e1800079. PMID 30079608. doi:10.1002/mnfr.201800079. 
  8. ^ Loef, M.; Walach, H. Fruit, vegetables and prevention of cognitive decline or dementia: a systematic review of cohort studies.. Journal of Nutrition, Health & Aging. 2012, 16 (7): 626–630. PMID 22836704. doi:10.1007/s12603-012-0097-x. 
  9. ^ Tse, G; Eslick, G.D. Cruciferous vegetables and risk of colorectal neoplasms: a systematic review and meta-analysis.. Nutrition and Cancer. 2014, 66 (1): 128–139. PMID 24341734. doi:10.1080/01635581.2014.852686. 
  10. ^ Connolly, EL; Sim, M; Travica, N; Marx, W; Beasy, G; Lynch, GS; Bondonno, CP; Lewis, JR; Hodgson, JM; Blekkenhorst, LC. Glucosinolates From Cruciferous Vegetables and Their Potential Role in Chronic Disease: Investigating the Preclinical and Clinical Evidence.. Frontiers in pharmacology. 2021, 12: 767975. PMID 34764875. doi:10.3389/fphar.2021.767975. 
  11. ^ Tripathi, M.K.; Mishra, A.S. Glucosinolates in animal nutrition: A review. Animal Feed Science and Technology. 2007-01, 132 (1-2): 1–27. doi:10.1016/j.anifeedsci.2006.03.003. 
  12. ^ Plants Poisonous to Livestock: Glucosinolates (Goitrogenic Glycosides). Cornell University, Department of Animal Science. 10 September 2015 [16 August 2018]. (原始内容存档于2015-08-10). 
  13. ^ Samuni Blank, M; Arad, Z; Dearing, MD; Gerchman, Y; Karasov, WH; Izhaki, I. Friend or foe? Disparate plant–animal interactions of two congeneric rodents. Evolutionary Ecology. 2013, 27 (6): 1069–1080. doi:10.1007/s10682-013-9655-x. 
  14. ^ European Food Safety Authority (EFSA) (2008) Glucosinolates as undesirable substances in animal feed ‐ scientific opinion of the panel on contaminants in the food chain. EFSA J. 6, 590.
  15. ^ Lee, JW; Kim, IH; Woyengo, TA. Toxicity of Canola-Derived Glucosinolate Degradation Products in Pigs-A Review.. Animals : an open access journal from MDPI. 2020-12-09, 10 (12). PMID 33316893. doi:10.3390/ani10122337. 
  16. ^ Shahidi, F.; Naczk, M. Canola and Rapeseed. Removal of Glucosinolates and Other Antinutrients from Canola and Rapeseed by Methanol/Ammonia Processing. 1990: 291–306. doi:10.1007/978-1-4615-3912-4_17. 
  17. ^ Jhingan, Srijan; Harloff, Hans-Joachim; Abbadi, Amine; Welsch, Claudia; Blümel, Martina; Tasdemir, Deniz; Jung, Christian. Reduced glucosinolate content in oilseed rape (Brassica napus L.) by random mutagenesis of BnMYB28 and BnCYP79F1 genes. Scientific Reports. 2023-02-09, 13 (1). doi:10.1038/s41598-023-28661-6. 
  18. ^ Cruciferous Vegetables. Linus Pauling Institute. 2014-04-28 [2023-08-27]. (原始内容存档于2023-09-13) (英语). However, increased exposure to thiocyanate ions from cruciferous vegetable consumption or, more commonly, from cigarette smoking, does not appear to increase the risk of hypothyroidism unless accompanied by iodine deficiency. One study in humans found that the consumption of 150 g/day (5 oz/day) of cooked Brussels sprouts for four weeks had no adverse effects on thyroid function (56). Similarly, consumption of high amounts of cruciferous vegetables has been associated with increased thyroid cancer risk only in iodine-deficient areas (57). 
  19. ^ Van Doorn, Hans E; Van Der Kruk, Gert C; Van Holst, Gerrit-Jan; Raaijmakers-Ruijs, Natasja C M E; Postma, Erik; Groeneweg, Bas; Jongen, Wim H F. The glucosinolates sinigrin and progoitrin are important determinants for taste preference and bitterness of Brussels sprouts. Journal of the Science of Food and Agriculture. 1998, 78: 30–38. doi:10.1002/(SICI)1097-0010(199809)78:1<30::AID-JSFA79>3.0.CO;2-N. 
  20. ^ Samuni-Blank, M; Izhaki, I; Dearing, MD; Gerchman, Y; Trabelcy, B; Lotan, A; Karasov, WH; Arad, Z (2012). Intraspecific directed deterrence by the mustard oil bomb in a desert plant. Current Biology. 22:1-3.
  21. ^ Furlan, Lorenzo; Bonetto, Christian; Finotto, Andrea; Lazzeri, Luca; Malaguti, Lorena; Patalano, Giampiero; Parker, William. The efficacy of biofumigant meals and plants to control wireworm populations. Industrial Crops and Products. 2010, 31 (2): 245–254. doi:10.1016/j.indcrop.2009.10.012. 
  22. ^ Badenes-Pérez, Francisco Rubén; Reichelt, Michael; Gershenzon, Jonathan; Heckel, David G. Phylloplane location of glucosinolates in Barbarea spp. (Brassicaceae) and misleading assessment of host suitability by a specialist herbivore. New Phytologist. 2011, 189 (2): 549–556. ISSN 0028-646X. PMID 21029103. doi:10.1111/j.1469-8137.2010.03486.x. 
  23. ^ Wittstock, U; Agerbirk, N; Stauber, EJ; Olsen, CE; Hippler, M; Mitchell-Olds, T; Gershenzon, J; Vogel, H. Successful herbivore attack due to metabolic diversion of a plant chemical defense. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2004, 101 (14): 4859–64. Bibcode:2004PNAS..101.4859W. PMC 387339 . PMID 15051878. doi:10.1073/pnas.0308007101. 
  24. ^ Ratzka, A.; Vogel, H.; Kliebenstein, D. J.; Mitchell-Olds, T.; Kroymann, J. Disarming the mustard oil bomb. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002, 99 (17): 11223–11228. Bibcode:2002PNAS...9911223R. PMC 123237 . PMID 12161563. doi:10.1073/pnas.172112899. 
  25. ^ Müller, C; Agerbirk, N; Olsen, CE; Boevé, JL; Schaffner, U; Brakefield, PM. Sequestration of host plant glucosinolates in the defensive hemolymph of the sawfly Athalia rosae. Journal of Chemical Ecology. 2001, 27 (12): 2505–16. PMID 11789955. doi:10.1023/A:1013631616141. 
  26. ^ Bridges, M.; Jones, A. M. E.; Bones, A. M.; Hodgson, C.; Cole, R.; Bartlet, E.; Wallsgrove, R.; Karapapa, V. K.; Watts, N.; Rossiter, J. T. Spatial organization of the glucosinolate-myrosinase system in brassica specialist aphids is similar to that of the host plant. Proceedings of the Royal Society B. 2002, 269 (1487): 187–191. PMC 1690872 . PMID 11798435. doi:10.1098/rspb.2001.1861. 
  27. ^ Wheat, C. W.; Vogel, H.; Wittstock, U.; Braby, M. F.; Underwood, D.; Mitchell-Olds, T. The genetic basis of a plant insect coevolutionary key innovation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2007, 104 (51): 20427–31. Bibcode:2007PNAS..10420427W. PMC 2154447 . PMID 18077380. doi:10.1073/pnas.0706229104. 

外部链接

编辑