脂多糖
脂多糖(英语:Lipopolysaccharide,缩写: LPS)是由一种脂质和一种多糖组成的大分子,是细菌毒素。它们由含O-抗原、外核、内核组成,均以共价键连接,存在于细菌荚膜中,即革兰氏阴性细菌(如大肠杆菌和沙门氏菌)细胞膜的最外层。 如今,内毒素 (英语:endotoxin)一词通常与脂多糖同义,[1] 但也有一些内毒素(原意是指细菌细胞内的毒素,在细胞解体时释放出来)与脂多糖无关,如苏云金芽孢杆菌产生的所谓delta endotoxin蛋白[2]。
脂多糖对人体健康产生重大影响,主要是透过与免疫系统的相互作用。 [3]在严重的情况下,脂多糖会导致败血性休克。[4] 在较低水平和较长时期内,有证据表明脂多糖可在自体免疫、肥胖、忧郁和细胞衰老中发挥重要的有害作用。
发现过程
编辑LPS的毒性是由李察•菲佛首次发现的,并认为是被细菌释放到周围环境中的内毒素,平常保存在细菌细胞内,仅在破坏细菌细胞壁后才会被释放[5]:84。随后的研究表明,从革兰氏阴性微生物中释放LPS,不一定需要破坏细菌细胞壁,反而LPS可作为膜小泡运输正常生理活动的一部分,以OMVs形式分泌出来,包含着其他致病因子和蛋白质[6]。如今,内毒素通常与LPS同义[7],不过仍有一些与LPS不相关的内毒素,例如革兰氏阳性的苏云金芽孢杆菌所分泌的bt毒蛋白。
结构
编辑脂多糖通常由三部分组成:
- 多糖链,又称多聚O抗原链(O polysaccharide) ,是细菌菌体抗原的抗原决定簇。由多个寡糖重复单位组成。 通常由1至6个糖残基重复单位构成,具有很高的可变性,仅在大肠杆菌中就有170多种不同的多糖链已被报道[8][9]。但多糖链并不存在于所有的革兰氏阴性菌中,其在某些革兰氏阴性菌中是缺乏的,如脑膜炎双球菌和博德氏菌属。这种不存在多糖链的脂多糖有时也被叫做脂寡糖[10]。多糖链存在与否决定LPS是粗糙或光滑,标准长度的多糖链会使LPS光滑,而缺少或减少多糖链则会使LPS变得粗糙[11]。具有粗糙LPS的细菌通常具有比疏水性抗生素更渗透的细胞膜,因为粗糙LPS更具疏水性[12]。
- 核心多糖,在结构上分为内核心寡糖和外核心寡糖,其中内核心寡糖由3个KDO结构和3个庚糖结构组成[13][14]。许多细菌的LPS核心多糖还包含非碳水化合物成分,例如磷酸盐、氨基酸和乙醇胺取代基等。绿脓杆菌在革兰氏阴性菌中具有最磷酸化的内核心寡糖:LD-Hep残基HepI被3个磷酸残基和1个PEtN修饰,而另一个LD-Hep残基HepII则被3个磷酸残基和1个氨基甲酰基(Cm)修饰[15]。
- 脂质A,是细菌内毒素活性的根源,并且帮助脂多糖分子锚定在外膜上[16]。与多糖链不同,脂质A和核心寡糖是具有LPS的革兰氏阴性菌均会存在的结构。绝大多数脂质A是由一个葡萄糖胺二糖构成的。其中大肠杆菌的脂质A在第1和4位点被磷酸化;在2和2位点各有一条脂肪酰链;在3和3位点上各有一条酯链,并且在二糖骨干上的2和3的主酯链上会再次酯化,连接一条次级脂肪酸链。这种结构通常在革兰氏阴性菌中,只会在各脂肪酸链所在的二糖主骨干的位点上会有所差异。脂质A可被宿主血清中的LPS结合蛋白(LBP)探查到。这依赖于分化辅助因子14(CD14)和骨髓分化因子2(MD2),然后被调理素受体CD14识别,形成一个三元复合物。随后这个复合物激活Toll样受体4(TLR4),从而引发信号级联反应,导致细胞因子和凝血因子的产生,以及CAMPs和其他刺激性分子的分泌。CAMPs会通过与带负电的脂质A磷酸基团结合来帮助确定入侵的病原体,最终导致细胞的裂解和死亡[15]。
脂寡糖
编辑脂寡糖(Lipooligosaccharides,LOS)是脂多糖的相对不常见结构。LOS是在某些类型的革兰氏阴性细菌外膜中发现的糖脂,例如奈瑟菌属和嗜血杆菌属。该术语与细菌LPS的低分子量形式同义[17]。LOS在维持革兰氏阴性细菌外膜的完整性和功能性方面起著核心作用。脂寡糖在某些细菌感染的发病机理中起著重要的作用。因为它们能够充当免疫调节剂[17]。此外,LOS分子负责一些细菌菌株展示其分子拟态和抗原变异的能力,有助逃避宿主的免疫防御系统,从而提升细菌菌株的病毒性。 脂寡糖缺乏多糖链,仅具有基于脂质A的外膜锚定部分和寡糖核心[18]。在脑膜炎双球菌的情况下,分子的脂质A部分具有对称结构,内核心寡糖由KDO和庚糖部分组成,而外核心寡糖则取决于细菌的分型[17][18]。脂寡糖是指细菌中脂多糖的低分子量形式,可分为两种形式:高分子量形式(Mr或平滑)具有高分子量、重复多糖O链,而低分子量形式(低Mr或粗糙)则缺少O链,但有短的寡糖取代其位置[17]。
功能
编辑细菌方面
编辑脂多糖是大多数革兰氏阴性细菌胞膜的主要成分,为细菌的结构完整性做出了巨大贡献,正因为革兰氏阴性菌的外膜有大量脂多糖分子,才使得其细胞膜具有独特的难渗透性,有效帮助细菌细胞应对外界有害刺激,使胞膜免受某些化学攻击。此外,脂多糖还增加了细胞膜的负电荷,并有助于稳定整个胞膜的结构。 这对于许多革兰氏阴性细菌至关重要,然而脂多糖在某些革兰氏阴性细菌中并无巨大重要性,例如脑膜炎双球菌、卡他莫拉菌和鲍氏不动杆菌[19]。LPS会引起动物免疫系统的强烈反应。 它还涉及细菌生态学的非致病性方面,包括表面粘附现象、噬菌体敏感性以及与天敌的相互作用。 脂多糖是构建Pla活性必需的东西,然而平滑的脂多糖在空间上会阻碍到Pla。
对感染革兰氏阴性细菌宿主的生物影响
编辑免疫反应
编辑LPS是典型的内毒素,因为它在许多细胞类型中,尤其是在单核细胞、树突状细胞、巨噬细胞和B细胞中结合了CD14 / TLR4 / 髓样分化蛋白2受体复合物,从而促进促炎性细胞因子、一氧化氮和类花生酸的分泌[20]。作为细胞应激反应的一部分,超氧化物是在各种细胞类型中被诱导的主要活性氧之一,当中会表达类铎受体。同时,LPS也是外源的热原(即导致发烧的物质) 。这对于革兰氏阴性细菌至关重要,因为这些分子成为新的抗微生物剂剂的候选靶标[21]。此外,LPS对许多转录因子的激活作用是一直处于实验研究状态的议题。 LPS还会产生与败血性休克有关的多种介体。人类对LPS的敏感性比其他动物高。1μg/ kg的剂量就会令人类休克,但是小鼠最多可以耐受比其多一千倍的剂量[22]。这可能与两个物种之间循环天然抗体 (circulating natural antibodies) 水平的差异有关[23][24]。
生物合成过程
编辑O抗原的生物合成已知有三种途径。第一是Wzy依赖途径,第二是ABC转运蛋白依赖途径,而第三则是合成酶依赖途径。前两个途径很常见,而合成酶依赖途径则不常见,然而三通路有类似的起始反应:形成十一异戊二烯焦磷酸(Und-PP)并连接糖,通常由WecA和GlcNAc-1P转运酶催化,形成Und-PP-GlcNAc[15]。
在Wzy依赖途径中,O抗原亚基通过Wzx翻转酶,跨越内膜来移位至外周胞质中,再通过Wzy进行聚合,并由Wzz调节最终的O抗原链长度接著通过WaaL进行连接。接著再通过MsbA形成完整的和已移位的Core-Lipid A分子[25]。在ABC转运蛋白依赖途径中,整个O抗原是在细胞质中组装的,然后由Wzm和Wzt组成的ABC转运蛋白转运出去。Wzm形成膜通道,而Wzt提供了转运能量[15]。在合成酶依赖途径中,依赖两种酶WbbE和WbbF,同时通过内膜延长并排出O抗原[15]。
运输过程
编辑透过将细胞内已装配完整的LPS正确装配到外膜,使得与脂多糖相关的阻渗、有机溶剂耐受性、疏水性抗生素耐受性及膜通透性等功能得以实现。该运输系统的作用主要依赖7个不同的脂多糖运输蛋白 (LptABCDEFG) 协同完成。整个系统贯穿细菌内膜至外膜,并且由ABC转运体复合物LptB2FG、胞质内协同转运蛋白LptA和LptC,以及外膜蛋白复合物LptDE共同构成。
首先,细胞内膜上蛋白复合物共同形成ABC转运体复合物,接收由MsbA翻转酶翻转出内膜的完整脂多糖结构[27]。LPS翻转出内膜的细胞周质面后,会被呈递给ABC转运体的LptB2FG,构建出一个针对LPS的信号转导通路,并且将LPS运输至周质转运蛋白LptA/C。因本身携带有大量的负电荷而会对邻近的分子间产生静电排斥力的脂质A,使得LPS能沿LptA-LptC进行单向移动。接著,LPS会通过LptA与LptD间的水溶性周质结构,被运输至位于外膜的β桶状蛋白LptD的氮端,并且插入LptD的内部。在LptD的碳端桶状蛋白结构中,由LptD的分子伴侣LptE进行方向调整,使其垂直于外膜,并且在外膜带正电荷的Mg2+的帮助下完成在LptD蛋白中的侧向移动过程。最终,LPS成功装配到外膜上[28][29]。
修饰
编辑通过修饰LPS,可以呈现特定的糖结构。这些可以被能够抑制LPS毒素的LPS识别,抑或被使用这些糖结构,添加更多特定糖的糖基转移酶识别。有研究显示,肠中的一种碱性磷酸酶可以通过去除LPS中碳水化合物上的两个磷酸基团,使LPS解毒[30] 。这可能是一种适应机制,可帮助宿主管理小肠中革兰氏阴性细菌的潜在毒性。当LPS进入动物组织或在动物组织中产生时,其他酶可能会帮助LPS解毒。中性粒细胞、巨噬细胞和树突状细胞产生脂酶,而酰氧基酰基水解酶(AOAH)则通过从脂质A中去除两条二级酰基链令LPS失活。如果在胃肠外给予LPS,缺乏酰氧基酰基水解酶的小鼠就会产生高滴度的非特异性抗体,延长肝肿大和经历很长的内毒素耐受性。胃肠外的LPS暴露后,动物可能需要失活LPS来恢复体内平衡[31]。
对健康的影响
编辑一般来说,脂多糖对健康的影响是由于其作为免疫系统的强效活化剂和调节剂的能力,特别是其诱发发炎的能力。
内毒素血症
编辑内毒素血症是由血中细菌或病灶内细菌释放出大量内毒素至血液或向血液中输入大量内毒素污染的液体而引起的一种病理表现[32],大约有9%的内毒素血症患者会发生多器官功能衰竭等症状,全球的内毒素血症发生率以每年1.5%的速度增长。
肠源性内毒素血症 (IETM) ,尤其是在宿主-病原体界面的内毒素血症,被认为是酒精性肝炎发展的重要因素。这可能是由于小肠细菌过度生长,以及肝炎引起的肠道通透性增加[33],肠道革兰阴性菌产生的内毒素容易进入循环系统,过量的内毒素随著肠肝循环进入到肝脏[34]。
随著细菌在血液中繁殖,还可以在病程的后期,观察到明显的补体激活[35]。高细菌增殖引发破坏性的内皮损伤也可能导致弥漫性血管内凝血(DIC)。由于血液供应受损,某些内部器官(例如肾脏,肾上腺和肺)的功能会丧失。皮肤有显示出血管损伤的作用,通常伴有瘀点、紫癜和瘀斑形式的凝血因子耗竭。肢体也可能受到一定的影响,有时会造成毁灭性的后果,例如因坏疽的形成而需要截肢[35]。而肾上腺的功能丧失会导致肾上腺功能不全,肾上腺的额外出血会导致沃特豪斯-弗里德里克森二氏症候群,两者均可能危及生命。
脂质A可能导致哺乳动物免疫系统不受控制的激活,并且产生多种炎性介质,从而可能导致败血性休克[18]。这种炎症反应是由Toll样受体4介导的[18],后者是心脏及血管细胞膜上革兰氏阴性菌的脂多糖的近端受体,其下端激活蛋白包括p38丝裂原活化蛋白激酶 (p38MAPK)、氨基末端激酶 (JNK) 和胞外信号调节激酶 (ERK) 等,负责免疫系统细胞的活化。这些炎性介质对血管内皮层的损害,可以导致毛细血管渗漏综合征 (capillary leak syndrome) 、血管扩张和心脏功能下降[35]。
研究表明,促炎性细胞因子如肿瘤坏死因子-α (TNF-α) 和白细胞介素-1β (IL-1β) 的过度释放可能是内毒素血症导致心功能障碍的主要原因[36]。IL-1β 和TNF-α 均能引起血压降低和休克,导致浓度依赖型的心肌细胞收缩性抑制,这两种因子有可能通过协同作用,引起与内毒素血症有关联的心肌抑制[37]。内毒素血症患者的组织损伤和多器官损伤与细胞内线粒体的功能紊乱有密不可分的联系[38]。内毒素血症时,TNF-α受体激活线粒体凋亡信号,在线粒体损伤初期,线粒体磷脂双分子层膜的渗透性改变,呈持久的高通透性状态,一些离子内流使得线粒体膜电位异常,引致破裂。最终导致线粒体凋亡,造成心肌细胞能量供应不足,进而导致心肌细胞缺失,引起心功能障碍[39]。严重的内毒素血症和败血性休克与细胞内钙离子稳态的变化有关,通常伴随著收缩期细胞内钙离子浓度的减少和心肌收缩的减弱。
与肥胖的关系
编辑有研究表明,内毒素负荷增加是某些与肥胖有关的患者群体的致病原因,内毒素负荷增加是由于肠道内产生内毒素的细菌数量增加所致[40][41][42] 。其他研究表明,从大肠杆菌中纯化出的内毒素在注射入无菌模式生物后,可以诱导肥胖和胰岛素的抵抗[43]。最近的一项研究发现,阴沟肠杆菌B29对人类患者的肥胖和胰岛素抵抗具有潜在的作用[44] 。内毒素与肥胖症相关联的推测机制是内毒素诱导炎症介导的途径。埃希氏菌属和肠杆菌属是与内毒素相关的肥胖影响有关的细菌属。
作为污染物在生物技术和研究中的作用
编辑脂多糖是细菌制备的质粒DNA或细菌表现的蛋白质中常见的污染物,必须从DNA或蛋白质中移除,以避免污染实验,并避免工业发酵产品产生毒性[45]。
卵清蛋白经常受到内毒素的污染。卵清蛋白是动物模型中被广泛研究的蛋白质之一,也是气道高反应性(AHR)的成熟模型过敏原。受脂多糖污染的市售卵清蛋白可能会伪造研究结果,因为它不能准确反映蛋白质抗原对动物生理学的影响[46]。
在药品生产过程中,有必要清除药品容器中的所有微量内毒素,因为即使是微量的内毒素也会导致人体患病。为此需要使用去热原烘箱 (depyrogenation oven)。要完全分解脂多糖,温度必须超过300 °C [47]。
参见
编辑参考文献
编辑- ^ Rietschel ET, Kirikae T, Schade FU, Mamat U, Schmidt G, Loppnow H, et al. Bacterial endotoxin: molecular relationships of structure to activity and function. FASEB Journal. February 1994, 8 (2): 217–225. PMID 8119492. S2CID 28156137. doi:10.1096/fasebj.8.2.8119492 .
- ^ Höfte H, de Greve H, Seurinck J, Jansens S, Mahillon J, Ampe C, et al. Structural and functional analysis of a cloned delta endotoxin of Bacillus thuringiensis berliner 1715. European Journal of Biochemistry. December 1986, 161 (2): 273–280. PMID 3023091. doi:10.1111/j.1432-1033.1986.tb10443.x .
- ^ Roth J, Blatteis CM. Mechanisms of fever production and lysis: lessons from experimental LPS fever. Comprehensive Physiology. October 2014, 4 (4): 1563–1604. ISBN 978-0-470-65071-4. PMID 25428854. doi:10.1002/cphy.c130033.
- ^ Dellinger RP, Levy MM, Rhodes A, Annane D, Gerlach H, Opal SM, et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock: 2012. Critical Care Medicine. February 2013, 41 (2): 580–637. PMID 23353941. S2CID 34855187. doi:10.1097/CCM.0b013e31827e83af .
- ^ Parija SC. Textbook of Microbiology & Immunology. India: Elsevier. Jan 1, 2009 [2019-11-02]. ISBN 978-8131221631. (原始内容存档于2016-12-03).
- ^ Kulp A, Kuehn MJ. Biological functions and biogenesis of secreted bacterial outer membrane vesicles. Annu. Rev. Microbiol. 2010, 64: 163–84. PMC 3525469 . PMID 20825345. doi:10.1146/annurev.micro.091208.073413.
- ^ Rietschel ET, Kirikae T, Schade FU, Mamat U, Schmidt G, Loppnow H, Ulmer AJ, Zähringer U, Seydel U, Di Padova F. Bacterial endotoxin: molecular relationships of structure to activity and function. FASEB J. 1994, 8 (2): 217–25. PMID 8119492. doi:10.1096/fasebj.8.2.8119492. (原始内容存档于2013-11-25).
- ^ Whitfield, C; Trent, MS. Biosynthesis and export of bacterial lipopolysaccharides.. Annual review of biochemistry. 2014, 83: 99–128 [2019-11-01]. PMID 24580642. doi:10.1146/annurev-biochem-060713-035600.
- ^ Raetz, CR; Whitfield, C. Lipopolysaccharide endotoxins.. Annual review of biochemistry. 2002, 71: 635–700 [2019-11-01]. PMID 12045108. doi:10.1146/annurev.biochem.71.110601.135414.
- ^ Liu, B; Knirel, YA; Feng, L; Perepelov, AV; Senchenkova, SN; Reeves, PR; Wang, L. Structural diversity in Salmonella O antigens and its genetic basis.. FEMS microbiology reviews. 2014-01, 38 (1): 56–89. PMID 23848592. doi:10.1111/1574-6976.12034.
- ^ Rittig MG, Kaufmann A, Robins A, Shaw B, Sprenger H, Gemsa D, Foulongne V, Rouot B, Dornand J. Smooth and rough lipopolysaccharide phenotypes of Brucella induce different intracellular trafficking and cytokine/chemokine release in human monocytes. J. Leukoc. Biol. 2003, 74 (6): 1045–55. PMID 12960272. doi:10.1189/jlb.0103015.
- ^ Tsujimoto H, Gotoh N, Nishino T. Diffusion of macrolide antibiotics through the outer membrane of Moraxella catarrhalis. J. Infect. Chemother. 1999, 5 (4): 196–200. PMID 11810516. doi:10.1007/s101560050034.
- ^ Hershberger C, Binkley SB. Chemistry and metabolism of 3-deoxy-D-mannooctulosonic acid. I. Stereochemical determination. J. Biol. Chem. 1968, 243 (7): 1578–84. PMID 4296687.[失效链接]
- ^ Li, H; Yang, T; Liao, T; Debowski, AW; Nilsson, HO; Haslam, SM; Dell, A; Stubbs, KA; Marshall, BJ; Benghezal, M. Insights from the redefinition of Helicobacter pylori lipopolysaccharide O-antigen and core-oligosaccharide domains.. Microbial cell (Graz, Austria). 2017-04-25, 4 (5): 175–178. PMID 28685143. doi:10.15698/mic2017.05.574.
- ^ 15.0 15.1 15.2 15.3 15.4 罗敏菱. 幽門螺桿菌的脂多糖結構和生物合成. 心理医生. 2016, 23 (17): 233–239 [2019-11-03].
- ^ Tzeng YL, Datta A, Kolli VK, Carlson RW, Stephens DS. Endotoxin of Neisseria meningitidis composed only of intact lipid A: inactivation of the meningococcal 3-deoxy-D-manno-octulosonic acid transferase. J. Bacteriol. May 2002, 184 (9): 2379–88. PMC 134985 . PMID 11948150. doi:10.1128/JB.184.9.2379-2388.2002.
- ^ 17.0 17.1 17.2 17.3 Moran AP, Prendergast MM, Appelmelk BJ. Molecular mimicry of host structures by bacterial lipopolysaccharides and its contribution to disease. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1996, 16 (2): 105–15. PMID 8988391. doi:10.1016/s0928-8244(96)00072-7. (原始内容存档于2016-09-23).
- ^ 18.0 18.1 18.2 18.3 Kilár A, Dörnyei Á, Kocsis B. Structural characterization of bacterial lipopolysaccharides with mass spectrometry and on- and off-line separation techniques. Mass Spectrom Rev. 2013, 32 (2): 90–117. Bibcode:2013MSRv...32...90K. PMID 23165926. doi:10.1002/mas.21352.
- ^ Zhang G, Meredith TC, Kahne D. On the essentiality of lipopolysaccharide to Gram-negative bacteria. Curr. Opin. Microbiol. 2013, 16 (6): 779–785. PMC 3974409 . PMID 24148302. doi:10.1016/j.mib.2013.09.007.
- ^ Abbas, Abul. Basic Immunology. Elsevier. 2006. ISBN 978-1-4160-2974-8.
- ^ Stewart I, Schluter PJ, Shaw GR. Cyanobacterial lipopolysaccharides and human health - a review. Environ Health. 2006, 5: 7. PMC 1489932 . PMID 16563160. doi:10.1186/1476-069X-5-7.
- ^ Warren HS, Fitting C, Hoff E, Adib-Conquy M, Beasley-Topliffe L, Tesini B, Liang X, Valentine C, Hellman J, Hayden D, Cavaillon JM. Resilience to bacterial infection: difference between species could be due to proteins in serum. J. Infect. Dis. 2010, 201 (2): 223–32. PMC 2798011 . PMID 20001600. doi:10.1086/649557.
- ^ Reid RR, Prodeus AP, Khan W, Hsu T, Rosen FS, Carroll MC. Endotoxin shock in antibody-deficient mice: unraveling the role of natural antibody and complement in the clearance of lipopolysaccharide. J. Immunol. 1997, 159 (2): 970–5. PMID 9218618.
- ^ Boes M, Prodeus AP, Schmidt T, Carroll MC, Chen J. A critical role of natural immunoglobulin M in immediate defense against systemic bacterial infection. J. Exp. Med. 1998, 188 (12): 2381–6. PMC 2212438 . PMID 9858525. doi:10.1084/jem.188.12.2381.
- ^ Wang X, Quinn PJ. Lipopolysaccharide: Biosynthetic pathway and structure modification. Prog. Lipid Res. 2010, 49 (2): 97–107. PMID 19815028. doi:10.1016/j.plipres.2009.06.002.
- ^ Ruiz N, Kahne D, Silhavy TJ. Transport of lipopolysaccharide across the cell envelope: the long road of discovery. Nat. Rev. Microbiol. 2009, 7 (9): 677–83. PMC 2790178 . PMID 19633680. doi:10.1038/nrmicro2184.
- ^ May, JM; Sherman, DJ; Simpson, BW; Ruiz, N; Kahne, D. Lipopolysaccharide transport to the cell surface: periplasmic transport and assembly into the outer membrane.. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences. 2015-10-05, 370 (1679). PMID 26370939. doi:10.1098/rstb.2015.0027.
- ^ Schwalm, J; Mahoney, TF; Soltes, GR; Silhavy, TJ. Role for Skp in LptD assembly in Escherichia coli.. Journal of bacteriology. 2013-08, 195 (16): 3734–42 [2019-11-02]. PMID 23772069. doi:10.1128/JB.00431-13.
- ^ Putker, F; Bos, MP; Tommassen, J. Transport of lipopolysaccharide to the Gram-negative bacterial cell surface.. FEMS microbiology reviews. 2015-11, 39 (6): 985–1002. PMID 26038291. doi:10.1093/femsre/fuv026.
- ^ Bates JM, Akerlund J, Mittge E, Guillemin K. Intestinal alkaline phosphatase detoxifies lipopolysaccharide and prevents inflammation in zebrafish in response to the gut microbiota. Cell Host Microbe. 2007, 2 (6): 371–82. PMC 2730374 . PMID 18078689. doi:10.1016/j.chom.2007.10.010.
- ^ Munford R, Lu M, Varley AW. Kill the Bacteria...and Also Their Messengers? 103. 2009: 29–48. ISBN 9780123748324. PMC 2812913 . PMID 19755182. doi:10.1016/S0065-2776(09)03002-8.
|journal=
被忽略 (帮助) - ^ Opal SM. Endotoxins and other sepsis triggers. Contributions to Nephrology 167. 2010: 14–24. ISBN 978-3-8055-9484-4. PMID 20519895. doi:10.1159/000315915.
|journal=
被忽略 (帮助) - ^ Parlesak A, Schäfer C, Schütz T, Bode JC, Bode C. Increased intestinal permeability to macromolecules and endotoxemia in patients with chronic alcohol abuse in different stages of alcohol-induced liver disease. J. Hepatol. 2000, 32 (5): 742–7. PMID 10845660. doi:10.1016/S0168-8278(00)80242-1.
- ^ Ceccanti M, Attili A, Balducci G, Attilia F, Giacomelli S, Rotondo C, Sasso GF, Xirouchakis E, Attilia ML. Acute alcoholic hepatitis. J. Clin. Gastroenterol. 2006, 40 (9): 833–41. PMID 17016141. doi:10.1097/01.mcg.0000225570.04773.5d.
- ^ 35.0 35.1 35.2 Stephens DS, Greenwood B, Brandtzaeg P. Epidemic meningitis, meningococcaemia, and Neisseria meningitidis. Lancet. 2007, 369 (9580): 2196–210. PMID 17604802. doi:10.1016/S0140-6736(07)61016-2.
- ^ Merx, MW; Weber, C. Sepsis and the heart.. Circulation. 2007-08-14, 116 (7): 793–802. PMID 17698745. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.106.678359.
- ^ Kumar, A; Thota, V; Dee, L; Olson, J; Uretz, E; Parrillo, JE. Tumor necrosis factor alpha and interleukin 1beta are responsible for in vitro myocardial cell depression induced by human septic shock serum.. The Journal of experimental medicine. 1996-03-01, 183 (3): 949–58 [2019-11-08]. PMID 8642298. doi:10.1084/jem.183.3.949.
- ^ Brealey, D; Brand, M; Hargreaves, I; Heales, S; Land, J; Smolenski, R; Davies, NA; Cooper, CE; Singer, M. Association between mitochondrial dysfunction and severity and outcome of septic shock.. Lancet (London, England). 2002-07-20, 360 (9328): 219–23. PMID 12133657. doi:10.1016/S0140-6736(02)09459-X.
- ^ Chagnon, F; Metz, CN; Bucala, R; Lesur, O. Endotoxin-induced myocardial dysfunction: effects of macrophage migration inhibitory factor neutralization.. Circulation research. 2005-05-27, 96 (10): 1095–102. PMID 15879312. doi:10.1161/01.RES.0000168327.22888.4d.
- ^ Moreno-Navarrete JM, Ortega F, Serino M, Luche E, Waget A, Pardo G, Salvador J, Ricart W, Frühbeck G, Burcelin R, Fernández-Real JM. Circulating lipopolysaccharide-binding protein (LBP) as a marker of obesity-related insulin resistance. Int J Obes (Lond). 2012, 36 (11): 1442–9. PMID 22184060. doi:10.1038/ijo.2011.256.
- ^ Lepper PM, Schumann C, Triantafilou K, Rasche FM, Schuster T, Frank H, Schneider EM, Triantafilou M, von Eynatten M. Association of lipopolysaccharide-binding protein and coronary artery disease in men. J. Am. Coll. Cardiol. 2007, 50 (1): 25–31. PMID 17601541. doi:10.1016/j.jacc.2007.02.070.
- ^ Ruiz AG, Casafont F, Crespo J, Cayón A, Mayorga M, Estebanez A, Fernadez-Escalante JC, Pons-Romero F. Lipopolysaccharide-binding protein plasma levels and liver TNF-alpha gene expression in obese patients: evidence for the potential role of endotoxin in the pathogenesis of non-alcoholic steatohepatitis. Obes Surg. 2007, 17 (10): 1374–80. PMID 18000721. doi:10.1007/s11695-007-9243-7.
- ^ Cani PD, Amar J, Iglesias MA, Poggi M, Knauf C, Bastelica D, Neyrinck AM, Fava F, Tuohy KM, Chabo C, Waget A, Delmée E, Cousin B, Sulpice T, Chamontin B, Ferrières J, Tanti JF, Gibson GR, Casteilla L, Delzenne NM, Alessi MC, Burcelin R. Metabolic endotoxemia initiates obesity and insulin resistance. Diabetes. 2007, 56 (7): 1761–72. PMID 17456850. doi:10.2337/db06-1491.
- ^ Fei N, Zhao L. An opportunistic pathogen isolated from the gut of an obese human causes obesity in germfree mice. ISME J. December 2012, 7 (4): 880–4. PMC 3603399 . PMID 23235292. doi:10.1038/ismej.2012.153.
- ^ Wicks IP, Howell ML, Hancock T, Kohsaka H, Olee T, Carson DA. Bacterial lipopolysaccharide copurifies with plasmid DNA: implications for animal models and human gene therapy. Human Gene Therapy. March 1995, 6 (3): 317–323. PMID 7779915. doi:10.1089/hum.1995.6.3-317.
- ^ Watanabe J, Miyazaki Y, Zimmerman GA, Albertine KH, McIntyre TM. Endotoxin contamination of ovalbumin suppresses murine immunologic responses and development of airway hyper-reactivity. The Journal of Biological Chemistry. October 2003, 278 (43): 42361–42368. PMID 12909619. doi:10.1074/jbc.M307752200 .
- ^ Komski L. The Detection of Endotoxins Via the LAL Test, the Chromogenic Method. Wako Chemicals USA, Inc. 16 December 2014 [14 March 2015]. (原始内容存档于29 March 2015).